PCR 플레이트 작업 시 오류를 방지하는 5가지 간단한 팁

중합효소연쇄반응(PCR)은 생명과학 실험실에서 널리 사용되는 방법 중 하나입니다.

PCR 플레이트는 샘플 또는 수집된 결과의 우수한 처리 및 분석을 위해 일류 플라스틱으로 생산됩니다.

정확한 열 전달을 제공하기 위해 얇고 균질한 벽을 가지고 있습니다.

실시간 적용을 준비하기 위해 DNA 또는 RNA의 미세한 부분을 격리하여 PCR 플레이트에 보관합니다.

PCR 플레이트는 열 밀봉에 매우 효율적이며 열 흐름도 제한합니다.

그러나 PCR 플레이트가 효과적이고 신뢰할 수 있기 때문에 샘플을 처리하는 동안 오류와 부정확성은 쉽게 무시됩니다.

그러므로 좋은 품질의 제품을 구입하는 데 관심이 있다면PCR 플레이트.신뢰할 수 있는 PCR 플레이트 제조업체에 문의하는 것이 이상적입니다.이를 통해 귀하는 최고의 거래를 확신할 수 있습니다.

시약이나 시료의 오염을 방지하고 결과에 부정확성이 발생하는 것을 방지하기 위해 따라야 할 몇 가지 예방 조치는 다음과 같습니다.

주변 소독하기
불순물의 존재로 인해 잘못된 양성 또는 음성이 발생하므로 결과가 의심됩니다.

불순물과 오염물질은 관련 없는 DNA나 화학 첨가물과 같은 다양한 형태로 발생하여 결국 반응의 효율성과 효과를 감소시킵니다.

PCR 플레이트의 오염 속도를 크게 줄이는 방법에는 여러 가지가 있습니다.

멸균된 필터 팁을 사용하는 것은 피펫을 통해 불순물이 샘플에 들어가는 것을 방지하는 또 다른 유용한 방법입니다.

PCR 전용으로 피펫과 랙으로 구성된 완전히 깨끗한 장비 세트를 사용하십시오.이는 실험실 주변의 불순물이나 오염 물질의 이동을 무시할 수 있는 수준으로 보장합니다.

표백제, 피펫, 랙 및 벤치의 에탄올을 활용하여 오염 물질을 닦아냅니다.

입자 오염을 더욱 최소화하려면 모든 PCR 반응에 예약된 공간을 할당하십시오.

모든 단계에서 깨끗한 장갑을 사용하고 자주 교체하십시오.

PCR 플레이트
템플릿의 농도와 순도를 검사합니다.
PCR로 검체를 분석할 때 사용하는 벤치와 장비의 청결도를 유지해야 합니다.분석 및 처리 전에 샘플의 순도를 검증하는 것이 필수적입니다.

일반적으로 분석기는 DNA 샘플의 농도와 순도 수준을 고려합니다.

260nm/280nm에 대한 흡광도 비율은 1.8보다 작아서는 안 됩니다.230nm에서 320nm 사이의 후속 파장은 불순물을 식별하는 데 사용됩니다.

경우에 따라 카오트로픽 염 및 기타 유기 화합물은 230nm 흡광도 속도에서 검출됩니다.DNA 샘플의 탁도도 320nm의 흡광도에서 감지 및 검증됩니다.

PCR 플레이트에 제품이 과부하되지 않도록 하십시오.
여러 제품을 동시에 실행하려는 만큼 PCR 플레이트가 교차 오염될 수 있습니다.

다양한 제품으로 PCR 플레이트를 오버로드하면 낭비가 발생하고 샘플을 확인하기가 매우 어려워집니다.

Aliquot PCR 시약 기록 보관
지속적인 동결/해동 주기와 빈번한 분취량 사용은 재결정화를 통해 PCR 시약, 효소 및 DNTP를 손상시킬 수 있습니다.

분석할 샘플을 준비하는 동안 사용된 분취량의 비율을 항상 모니터링하도록 노력하십시오.

선호되는 LIMS는 재고와 냉동 또는 해동되는 시약 및 샘플의 양을 제어하는 ​​데 더 적합합니다.

최고의 어닐링 온도를 선택하세요.
잘못된 어닐링 온도를 선택하고 사용하는 것은 PCR 결과에 오류가 있는 또 다른 방법입니다.

때로는 반응이 계획대로 진행되지 않습니다.성공적인 반응을 촉진하기 위해서는 어닐링 온도를 낮추는 것이 바람직합니다.

그러나 온도를 낮추면 위양성 및 프라이머 이량체 출현 가능성이 높아집니다.

PCR 플레이트를 사용할 때 용융 곡선 분석을 확인하는 것은 올바른 어닐링 온도를 선택하는 좋은 지표이기 때문에 중요합니다.

Primer 디자인 소프트웨어는 PCR 플레이트의 오류를 직접적으로 줄여 설계 및 올바른 어닐링 온도 제공을 돕습니다.

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게시 시간: 2021년 10월 30일